Integriertes zoologisches Forschungslabor

Morphologische, histologische und molekulare Analysen an zoologischen Objekten

Das integrierte zoologische Forschungslabor des Museums für Naturkunde Berlin bietet eine leistungsfähige Forschungsinfrastruktur für morphologische, histologische und molekulare Untersuchungen an zoologischen Objekten. Es ermöglicht Genexpressionsstudien, immunhistochemische Analysen sowie licht- und elektronenmikroskopische Dokumentationen und unterstützt Projekte, die eng an die Forschungsfragen des Museums anknüpfen. 

Auf einer Fläche von über 700 Quadratmetern vereint das Labor Großgeräte für Analysen und die zugehörigen Vorbereitungslabore. Diese räumliche und methodische Bündelung unterstützt die Kombination unterschiedlicher Untersuchungsverfahren und optimiert Arbeitsabläufe. Das Labor ist inhaltlich und räumlich eng mit dem DNA-Labor verknüpft. 

Wofür eignet sich das integrierte zoologische Forschungslabor?

Das Labor eignet sich insbesondere für: 

  • morphologische und funktionelle Untersuchungen zoologischer Objekte 
  • histologische Analysen von Geweben und Organen 
  • licht- und elektronenmikroskopische Dokumentation 
  • immunhistochemische Nachweise zellulärer Prozesse 
  • Genexpressionsstudien 
  • vergleichende Untersuchungen zur Evolution von Organsystemen 
  • interdisziplinäre Projekte an der Schnittstelle von Zoologie, Entwicklungsbiologie und Evolutionsforschung 

Kontakt

Prof. Dr. Carsten Lüter
Laborleitung & Kontaktperson
E-Mail: Carsten.Lueter@mfn.berlin
Telefon: 030 889140-8529

Maria Schauer
Labormitarbeit
E-Mail: Maria.Schauer@mfn.berlin
Telefon: 030 889140-8654

Anke Sänger
Labormitarbeit
E-Mail: Anke.Saenger@mfn.berlin 

Nutzung und Zusammenarbeit

Die Laborinfrastruktur steht Mitarbeitenden des Museums, Studierenden, Doktorand:innen, Postdocs sowie Gastwissenschaftler:innen offen. Eine Nutzung ist im Rahmen gemeinsamer Forschungsprojekte und nach vorheriger Absprache möglich. 

Auch externe Forschende können das Labor im Rahmen kooperativer Projekte nutzen. Voraussetzung sind eine inhaltliche Anbindung an die Forschungsfragen des Museums sowie verfügbare Kapazitäten. 

Für Anfragen zur Nutzung oder zur Entwicklung gemeinsamer Projekte wenden Sie sich bitte an die zuständige Kontaktperson. 

Ausstattung

Rasterelektronenmikroskop ZEISS EVO LS 10 

  • Untersuchung feinster morphologischer Oberflächenstrukturen 
  • Analyse unbedampfter Proben durch variablen Druck 
  • SE-, VPSE- und BSE-Detektoren 
  • Probenkühlung über Peltier-Element möglich 

Transmissionselektronenmikroskop LEO 906 

  • Analyse von Ultradünnschnittserien 
  • Untersuchung subzellulärer Strukturen 
  • Hochspannung: 80 kV 
  • Stufenlose Vergrößerungen im drei- bis sechsstelligen Bereich 
  • Bildaufnahme über 2K-CCD-Kamera 

Konfokales Laserscanmikroskop LEICA TCS SPE 

  • Lokalisation von Fluoreszenzsignalen in Geweben 
  • Nachweis von Autofluoreszenz und Antikörpermarkierungen 
  • Diodenlaser für vier Wellenlängen inklusive UV-Kanal 

Diverse Lichtmikroskope und Scaneinrichtungen 

  • Lichtmikroskope ZEISS Axioskop 
  • Lichtmikroskop ZEISS AxioImager-M2m (gem. Nutzung mit FB2) 
  • Mikropräparatescanner ZEISS AxioScanZ (gem. Nutzung mit FB2) 
  • Makroskop Leica Z16 Apo  
  • Stereomikroskop Leica M205C  

Probenvorbereitung 

  • Ultramikrotome Reichert UltracutE, Leica UCT, Leica UC7 
  • Cryomikrotom Leica CM3050 
  • Kritisch-Punkt-Trockner Leica CPD 300 
  • Sputter-Coater Quorum Q150 RS 
  • Vibratom Leica VT 1200S 
  • Einbettautomat Leica TP1020 
  • Ausgießstation Leica Histocore 
  • Eindeckautomat Leica CV 5030 

Laborverfahren und Analysemethoden

  • Histologie 
  • Lichtmikroskopie 
  • Rasterelektronenmikroskopie (REM) 
  • Transmissionselektronenmikroskopie (TEM) 
  • Immunhistochemische Untersuchungen 
  • Genexpressionsstudien 
  • Fluoreszenzmikroskopie 
  • Konfokale Laserscanmikroskopie 
  • Präparation von Schnittserien für Licht- und Elektronenmikroskopie 

Anwendungen in Forschung und Projekten

Anwendungen in Forschung und Projekten

Paganos, P., Ullrich-Lüter, J., Almazán, A., Voronov, D., Carl, J., Zakrzewski, A.C., Zemann, B., Rusciano, M.L., Sancerni, T., Schauer, M., Akar, O., Caccavale, F., Cocurullo, M., Benvenuto, G., Croce, J.C., Lüter, C., Arnone, M.I. (2025). Single-nucleus profiling highlights the all-brain echinoderm nervous system. Science Advances, 11(45), eadx7753. DOI: https://doi.org/10.1126/sciadv.adx7753

Setyastuti, A., Solis-Marin, F.A., Lüter, C. (2024). Sea cucumbers of the genus Labidodemas (Holothuroidea: Holothuriida: Holothuriidae) from Indonesia, with the description of a new species and a revised key to the genus. Zootaxa, 5506(2), 227-244. DOI: https://doi.org/10.11646/zootaxa.5506.2.4

æ Bothe, V., Fröbisch, N. (2025). The tiger salamander as a promising alternative model organism to the axolotl for fracture healing and regenerative biology research. The Anatomical Record. DOI: https://doi.org/10.1002/ar.70060

æ Bothe, V., Müller, H., Shubin, N., Fröbisch, N. (2024). Effects of life history strategies and habitats on limb regeneration in plethodontid salamanders. Developmental Dynamics, 254(5), 396-419. DOI: https://doi.org/10.1002/dvdy.742

æ Benvenuto, G., Leone, S., Astoricchio, E., Bormke, S., Jasek, S., D’Aniello, E., Kittelmann, M., McDonald, K., Hartenstein, V., Baena, V., Escrivà, H., Bertrand, S., Schierwater, B., Burkhardt, P., Ruiz-Trillo, I., Jékely, G., Ullrich-Lüter, J., Lüter, C., D’Aniello, S., Arnone, M.I., Ferraro, F. (2024). Evolution of the ribbon-like organization of the Golgi apparatus in animal cells. Cell Reports, 43(3), 113791. DOI: https://doi.org/10.1016/j.celrep.2024.113791